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Les feuilles grossissent-elles en ajoutant des cellules au centre ou au bord ?

Les feuilles grossissent-elles en ajoutant des cellules au centre ou au bord ?


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J'écris un article sur le froissement des feuilles des plantes. Pour des informations biologiques et physiques, j'aimerais savoir si les feuilles poussent en ajoutant des cellules au bord, au centre ou d'une manière complètement différente. Puisque j'ai besoin de confirmer toute information que je reçois, veuillez ne pas écrire d'opinions ou de suppositions. Ce serait formidable si quelqu'un pouvait trouver une source fiable avec un lien car toutes mes recherches n'ont pas conduit à une bonne réponse à cette question. Merci d'avance!


Les feuilles des plantes se développent à partir du tissu du primordium des feuilles ou du méristème (ce tissu a des propriétés spéciales qui lui permettent de continuer à se diviser pour produire plus de cellules, c'est-à-dire des cellules souches - pas des cellules souches comme les cellules souches, mais le terme technique « cellules souches ». En raison des équilibres hormonaux pour maintenir cette propriété de division, le tissu du méristème restera proche de la tige ou de la branche de la plante à la base de la feuille tandis que les nouvelles cellules ajoutées à la feuille se déplaceront lentement vers l'extérieur. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1369526616300929


Comment les pétales prennent leur forme : carte cachée située dans les bourgeons en croissance de la plante

Pourquoi les pétales de rose ont-ils des extrémités arrondies alors que leurs feuilles sont plus pointues ? Dans une nouvelle étude publiée le 30 avril dans la revue en libre accès PLOS Biologie, des scientifiques du John Innes Center et de l'Université d'East Anglia, au Royaume-Uni, révèlent que la forme des pétales est contrôlée par une carte cachée située à l'intérieur des bourgeons en croissance de la plante.

Les feuilles et les pétales remplissent différentes fonctions liées à leur forme. Les feuilles acquièrent des sucres pour une plante via la photosynthèse, qui peuvent ensuite être transportés dans toute la plante. Les pétales se développent plus tard dans le cycle de vie et aident à attirer les pollinisateurs. Dans des travaux antérieurs, cette équipe avait découvert que les feuilles de la plante Arabidopsis contiennent une carte cachée qui oriente la croissance selon un motif qui converge vers la pointe du bourgeon, donnant aux feuilles leurs pointes pointues caractéristiques. Dans la nouvelle étude, les chercheurs découvrent que Arabidopsis les pétales contiennent une carte cachée similaire qui oriente la croissance dans le bouton de la fleur. Cependant, le schéma de croissance est différent de celui des feuilles - la croissance des pétales est orientée vers le bord donnant une forme plus arrondie - ce qui explique les différentes formes de feuilles et de pétales. Les chercheurs ont découvert que des molécules appelées protéines PIN sont impliquées dans cette croissance orientée, qui se situent vers les extrémités de chaque cellule.

"La découverte de ces cartes de polarité cachées a été une véritable surprise et fournit une explication simple sur la façon dont différentes formes peuvent être générées", a déclaré le professeur Enrico Coen, auteur principal de l'étude.

L'équipe de chercheurs a confirmé ses idées en utilisant des simulations informatiques pour tester quelles cartes pourraient prédire la forme correcte des pétales. Ils ont ensuite confirmé expérimentalement que les protéines PIN situées aux bons sites pour être impliquées dans la croissance orientée, et ont identifié qu'une autre protéine, appelée JAGGED, est impliquée dans la promotion de la croissance vers le bord des pétales et dans l'établissement de la carte cachée qui détermine la croissance et la forme des pétales. .

Contrairement aux cellules animales, les cellules végétales sont incapables de se déplacer et de migrer pour former des structures d'une forme particulière, et ces résultats aident donc à expliquer comment les plantes créent des organes de formes différentes - en contrôlant les taux et les orientations de la croissance cellulaire. Dans une perspective évolutive, ce système crée la flexibilité nécessaire aux organes végétaux pour s'adapter à leur environnement et développer différentes fonctions.


La tige :

Chez les plantes vasculaires les plus basses, comme chez les Psilotales, une démarcation nette entre la tige et les feuilles est difficilement possible. La limite entre la tige et les feuilles des plantes à graines est en effet incertaine.

Les deux tirent leur origine du même méristème apical, l'apex des pousses, et ils sont dans une large mesure interdépendants dans le processus de croissance et de différenciation. Pour ces raisons, certaines ouvrières préfèrent placer la tige et ses appendices foliaires (feuilles) sous le concept plus large de pousse. Cependant, c'est une question de pratique de prendre séparément les trois organes végétatifs importants.

Un aperçu de la structure interne des tiges est donné ici. Etant donné qu'il existe de grandes diversités quant à la nature des plantes, quelques dicotylédones et monocotylédones communes ont été sélectionnées pour l'étude des structures anatomiques.

Dicotylédones :

1. Jeune tige de tournesol :

Des coupes transversales et longitudinales à travers l'entre-nœud d'une jeune tige de tournesol (Helianthus annuus de la famille Compositae) doivent être prises et colorées de manière appropriée pour l'étude des structures internes. Il présenterait le plan suivant d'arrangement des tissus de la périphérie au centre de l'organe (Figs. 582 & 583).

C'est la zone unisériée la plus externe, constituée de cellules tabulaires attachées bout à bout sans laisser d'espaces intercellulaires. Les cellules vivent avec un protoplaste vacuolé. Les chloroplastes sont généralement absents. Les parois externes des cellules épidermiques sont cuticularisées pour contrôler la perte d'eau. Des stomates peuvent être présents ici et là. Un grand nombre d'excroissances velues multicellulaires se développent sur l'épiderme.

Il se produit à côté de l'épiderme et représente les tissus extrastellaires du sol. Chez le tournesol, le cortex de la tige est différencié en trois zones. Juste à l'intérieur de l'épiderme, il y a quelques couches de collenchyme, généralement angulaires, formant une bande continue. Cette bande collenchymateuse destinée à soutenir mécaniquement la tige en croissance, est appelée hypoderme.

À côté de l'hypoderme se trouvent quelques couches de parenchyme à paroi mince qui présentent des espaces intercellulaires bien visibles. Quelques glandes, chacune ayant une cavité creuse entourée de petites cellules épithéliales densément protoplasmiques, sont présentes ici et là dans la partie parenchymateuse.

Certains auteurs ont utilisé le terme « cortex général » pour cette partie (partie parenchymateuse) du cortex, mais cela est plutôt trompeur et a donc été abandonné. La dernière couche du cortex est une bande ondulée constituée de cellules de parenchyme en forme de tonneau compactes. Les grains d'amidon sont abondamment présents dans ces cellules.

Cette bande est appelée gaine d'amidon. Il est morphologiquement homologue à l'endoderme que l'on trouve couramment dans les racines. La gaine d'amidon est la couche limitante du tissu terrestre extrastélaire, le cortex.

Tous les tissus présents à l'intérieur de la gaine d'amidon constituent la stèle. C'est une siphonostèle disséquée, constituée de faisceaux vasculaires disposés en forme d'anneau et de tissus broyés intrastélaires.

Les faisceaux vasculaires sont généralement collatéraux et ouverts, avec le xylème et le phloème sur le même rayon, le xylème étant interne et le phloème externe. Une bande de méristème latéral, le cambium, est présente entre le xylème et le phloème.

Le xylème est typiquement endarque, montrant un mode de différenciation centrifuge du procambium. Les éléments du protoxylème, les trachéides et les trachées, avec des cavités plus petites et des épaississements annulaires et en spirale se produisent vers le centre et les éléments du métaxylème avec des piqûres et d'autres types d'épaississement sont présents vers la circonférence.

Les cellules du parenchyme du xylème sont plus petites que les autres cellules du parenchyme de la stèle. Le phloème est composé de tubes criblés, de cellules compagnes et de parenchyme du phloème. Le cambium du faisceau vasculaire, ce qu'on appelle fasciculaire (fascicule = faisceau), semble être composé de deux ou trois couches de cellules fusiformes, qui semblent rectangulaires en coupe transversale. Ce tissu est responsable de la croissance en épaisseur.

Tissus terrestres intrastellaires :

Contre chaque faisceau vasculaire, il y a une plaque de sclérenchyme formant quelque chose comme une calotte. C'est ce qu'on a appelé le chapeau de paquet. Les plaques de sclérenchyme et les cellules de parenchyme intermédiaires ont été considérées comme constituant le péricycle, la partie la plus externe de la stèle.

Mais les travailleurs modernes sont d'avis que les fibres associées au faisceau vasculaire dans la tige de tournesol, et en fait, dans de nombreuses autres plantes, appartiennent au phloème. Ainsi, le terme hard bast a également été attribué à ce patch. Une coupe complète (Fig. 582) montre que les faisceaux sont localisés vers la périphérie et que la grande partie centrale reste occupée par des cellules de parenchyme avec des espaces intercellulaires abondants. Cette partie est connue sous le nom de moelle ou moelle.

Les prolongements de la moelle rayonnent, pour ainsi dire, à travers les régions entre les faisceaux vasculaires, les régions dites interfasciculaires, et forment les rayons médullaires primaires. Ceux-ci sont également composés de cellules de parenchyme à paroi mince.

2. Jeune tige de Cucurbita :

Elle (Cucurbita maxima de la famille des Cucurbitacées) est une plante faible grimpant à l'aide des vrilles. Des coupes transversales et longitudinales de la tige sont réalisées, colorées convenablement et étudiées au microscope. Son contour est ondulé et présente donc des crêtes et des sillons distincts (Fig. 584). Les faisceaux vasculaires se présentent en deux anneaux.

Un anneau généralement constitué de cinq faisceaux vasculaires plus petits est présent contre les crêtes. Ce sont des faisceaux de traces de feuilles. Un autre anneau du même nombre de faisceaux apparaît contre les sillons. La partie centrale de la tige est creuse en raison de la désintégration de la moelle.

La tige de Cucurbita présente le plan d'arrangement des tissus suivant (Fig. 585) :

C'est comme d'habitude la zone monocouche constituée de cellules tabulaires compactes. Les cellules vivent avec des protoplastes vacuolés et des parois externes cuticularisées. Un grand nombre de poils multicellulaires se développe à partir de l'épiderme. Des stomates peuvent être présents dans la jeune tige.

Il se différencie en trois zones. L'hypoderme est constitué de cellules de collenchyme formant des plaques bien visibles en particulier au niveau des crêtes. Les cellules du collenchyme ne forment pas une bande continue, le nombre de couches se réduit vers les sillons et est interrompu par quelques cellules du parenchyme contenant des chloroplastes abondants.

Ces cellules photosynthétiques se trouvent en fait juste sous l'épiderme où sont présents les stomates. Des chloroplastes peuvent également être présents dans les cellules du collenchyme. À côté de l'hypoderme, il y a quelques couches de parenchyme, de plus grande taille et ayant moins de chloroplastes. La dernière couche du cortex est la gaine d'amidon, une couche de cellules en forme de tonneau, plus grande que les autres cellules du cortex. Ces cellules contiennent des grains d'amidon abondants. Le cortex est naturellement plus large au niveau des crêtes qu'au niveau des sillons.

Le cylindre central ou stèle contenant les faisceaux vasculaires et les tissus broyés intrastélaires reste enveloppé par le cortex.

Quelques couches de sclérenchyme apparaissent sur la face interne de la gaine d'amidon sous la forme d'une bande continue. Certaines cellules du parenchyme sont généralement présentes entre la bande sclérenchymateuse et les faisceaux vasculaires. Ces tissus forment ensemble le péricycle. La moelle, comme déjà indiqué, se désintègre assez tôt dans la tige de Cucurbita. Les cellules situées entre les faisceaux vasculaires sont appelées parenchyme interne.

Les faisceaux vasculaires sont généralement bicollatéral, ayant deux plaques de phloème et deux bandes de cambium de chaque côté du Xylem. Ainsi, la séquence de tissus dans le faisceau vasculaire est le phloème externe, le cambium externe, le xylème, le cambium interne et le phloème interne. Les faisceaux, en particulier ceux apparaissant contre les sillons, sont assez volumineux et conviennent donc tout à fait à l'étude de la structure détaillée.

Le phloème externe est plus massif que l'intérieur et est composé de tubes criblés, de cellules compagnes et de parenchyme du phloème. Les tubes criblés sont assez visibles et des plaques criblées sont remarquées ici et là. Le Xylem a les éléments caractéristiques. Les vaisseaux du métaxylème sont de très grande taille, ce qui est caractéristique de la plupart des grimpeurs.

Ils ont des épaississements piqués. Un bon nombre de vaisseaux proto-Xylem avec des cavités relativement plus étroites se produisent vers le centre. Ils ont généralement des épaississements en spirale et annulaire. Les trachéides et les fibres sont plutôt peu nombreuses ou absentes, alors que les cellules du parenchyme du xylème sont abondantes. Les vaisseaux ne restent pas disposés en rangées radiales. Le cambium se trouve de chaque côté du xylème. Le cambium externe est à plusieurs couches et est constitué d'alvéoles de section plus ou moins rectangulaire. Le cambium interne est beaucoup plus petit et est généralement incurvé.

Comme la formation de tissus secondaires est confinée à des faisceaux individuels dans les plantes grimpantes comme Cucurbita, les faisceaux vasculaires peuvent également contenir des tissus secondaires, en plus des tissus primaires. Dans ce cas, le phloème externe peut être constitué d'un phloème primaire apparaissant vers le péricycle et d'un phloème secondaire contre le cambium.

Les éléments sont pratiquement les mêmes, de sorte que les deux sont à peine distinguables, seul le phloème secondaire a des éléments plus gros. Le phloème interne est uniquement primaire. Le xylème secondaire peut également se produire à l'intérieur du cambium externe. Les éléments, en particulier les vaisseaux, sont beaucoup plus gros.

3. Jeune tige de Leonurus :

Une très jeune tige de Leonurus sibiricus de la famille des Labiatae doit être sélectionnée, car la croissance secondaire commence inhabituellement tôt chez cette plante. Des coupes transversales sont prises et colorées de manière appropriée pour la structure interne. La tige est de section carrée.

Il montre le plan suivant d'arrangement des tissus (Figs. 586 & 587) :

C'est une zone unisériée composée de cellules tabulaires attachées bout à bout, sans espaces intercellulaires. Les cellules vivent avec des protoplastes vacuolés. Les parois externes sont fortement cuticularisées. De nombreux poils multicellulaires se développent sur l'épiderme. Des stomates peuvent être présents ici et là.

Comme la tige de tournesol, le cortex est différencié en trois zones, bien qu'il soit moins massif. A côté de l'épiderme se trouve l'hypoderme composé de cellules de collenchyme.

Ces cellules s'agrègent densément aux quatre coins de la tige, de sorte que ces plaques servent de poutres en I placées en diagonale pour résister à la flexion. Les cellules du collenchyme s'étendent au-delà des coins, mais ne forment pas de bandes continues. Il y a quelques couches de parenchyme à paroi mince juste à l'intérieur de l'hypoderme collenchymateux.

Ces cellules contiennent des chloroplastes abondants (chlorenchyme) et apparaissent comme une ceinture verte au microscope. Aux parties où le collenchyme est absent, les cellules de chlorenchyme se trouvent à côté de l'épiderme. Ce sont généralement les régions où les stomates sont présents sur l'épiderme. La dernière couche du cortex est la gaine d'amidon, composée de cellules en forme de tonneau disposées de manière compacte avec des grains d'amidon abondants.

Le cylindre central ou stèle est limité par la gaine d'amidon et est constitué de brins vasculaires et de tissus broyés intrastélaires. Quelques couches de sclérenchyme formant une bande continue apparaissent à côté de la gaine d'amidon. Il peut être appelé péricycle ou tissu périvasculaire.

Les faisceaux vasculaires sont disposés plus vers la périphérie, une grosse moelle parenchymateuse est présente à la partie centrale. Comme la croissance secondaire en épaisseur est initiée inhabituellement tôt, les rayons médullaires primaires perdent très vite leur identité.

Les faisceaux vasculaires sont une gaine d'amidon collatérale et ouverte. Le phloème est externe, c'est-à-dire qu'il se situe vers la périphérie et possède les éléments habituels : tubes criblés, cellules compagnes et parenchyme du phloème. A côté du phloème se trouve une bande de cambium, constituée de quelques couches de cellules fusiformes d'aspect plus ou moins rectangulaire.

L'anneau de cambium se forme assez tôt. Xylem se produit ensuite. Il a les éléments trachéaires habituels - trachéides et trachées, parenchyme et fibres. Le xylème est l'endarque - le protoxylème se produisant vers le centre et le métaxylème vers la circonférence.

4. Tige de Calotropis :

Une jeune tige de Calotropis procera de la famille des Asclepiadaceae est sélectionnée. Une coupe transversale à travers l'entre-nœud montrerait le plan suivant d'arrangement des tissus (Fig. 588).

Il est unisérié, avec des cellules tabulaires à parois externes cuticularisées. Les stomates sont présents ici et là. Les dépôts cireux sont assez fréquents.

Il se différencie en deux ou trois couches de collenchyme lacunaire formant l'hypoderme, de grandes cellules de parenchyme et la gaine d'amidon, constituée de cellules en forme de tonneau disposées de manière compacte avec des grains d'amidon.

Le cylindre central comprend les faisceaux vasculaires disposés de manière compacte avec des cellules des rayons intermédiaires et des tissus broyés intrastélaires.

Le péricycle est assez massif, fait de parenchyme (quelques couches) avec des plaques de fibres cellulosiques ici et là. La partie centrale est occupée par une grosse moelle parenchymateuse.

Les faisceaux vasculaires sont constitués de xylème interne avec un arrangement d'endarque, un phloème externe et un anneau de cambium entre les deux. La présence de plaques de phloème interne ou intraxylaire est un caractère distinctif.

5. Tige d'une dicotylédone aquatique :

Enhydra fluctuans de la famille Compositae est sélectionné. C'est une plante aquatique, et naturellement la tige est molle avec des chambres à air abondantes et des tissus mécaniques rares. Une coupe transversale à travers l'entre-nœud montrerait le plan suivant d'arrangement des tissus (Fig. 589).

Il s'agit d'une couche unisériée constituée de cellules relativement petites en boules minces. Les parois extérieures ont une cuticularisation faible.

Elle est moins massive ici que dans d'autres tiges dicotylédones terrestres. On remarque la différenciation du cortex en trois zones. À côté de l'épiderme, seules quelques couches de parenchyme avec des parois relativement plus épaisses forment une bande continue formant l'hypoderme. L'absence de collenchyme périphérique est donc une caractéristique notable.

La zone suivante se compose de plusieurs couches de parenchyme, de plus grande taille et ayant des espaces abondants et des chambres à air bien visibles. Ceux-ci sont utiles pour donner de la flottabilité aux plantes, en dehors de l'aération normale. Les chloroplastes sont présents dans les cellules du parenchyme. La dernière couche du cortex est comme d'habitude la gaine d'amidon, une couche ondulée composée de cellules en forme de tonneau disposées de manière compacte avec des grains d'amidon.

Le cylindre central ou stèle comprend les faisceaux vasculaires disposés en anneau et les tissus broyés intrastélaires.

Contre chaque faisceau vasculaire, il y a une tache de sclérenchyme, comme une tige de tournesol, mais beaucoup plus petite ici, formant ce que l'on appelle le liber dur ou chapeau de faisceau. Le patch de sclérenchyme avec le parenchyme intermédiaire a été appelé péricycle, bien que des doutes subsistent quant à l'origine des fibres. La moelle se désintègre en laissant une grande cavité dans la région centrale, on peut donc l'appeler moelle creuse. Certaines cellules du parenchyme se trouvent dans les régions interfasciculaires.

Les faisceaux vasculaires restent disposés en anneau. Ils sont collatéraux et ouverts. Le phloème est plutôt petit et possède les éléments habituels : tubes criblés, cellules compagnes et parenchyme du phloème. Une bande de cambium se forme entre le xylème et le phloème. Le xylème est également petit et se compose de quelques éléments de la trachée comme le protoxylème et le métaxylème montrant l'arrangement de l'endarque, et quelques cellules du parenchyme.

Monocotylédones :

Quelques plantes monocotylédones typiques sont sélectionnées pour l'étude des structures internes. Les graminées sont sans aucun doute les matériaux les plus appropriés à cet effet. Des coupes transversales et longitudinales sont prises, colorées de manière appropriée et le plan de disposition des tissus est noté.

1. Tige de maïs :

Il (Zea mays de la famille des Graminaceae) montre également les trois systèmes tissulaires, mais le nombre de faisceaux vasculaires est beaucoup plus important et ils restent dispersés de manière irrégulière dans le tissu au sol (Figs. 590 & 591). Les faisceaux apparaissant vers la périphérie sont de plus petite taille et plus encombrés, tandis que ceux de la région centrale sont de plus grande taille et plus espacés.

Tous les faisceaux sont communs à la tige et aux feuilles, les centraux issus des nervures médianes du limbe et les petits périphériques forment les faisceaux marginaux. Contrairement à la plupart des graminées, la tige du maïs n'est pas creuse dans la région internodale.

C'est une zone unisériée, composée de petites cellules serrées. Les parois extérieures sont cuticularisées. Les excroissances velues, si caractéristiques des dicotylédones, sont généralement absentes.

Le cortex et, en fait, le système tissulaire fondamental ne sont pas bien différenciés ici. Quelques couches de sclérenchyme, plutôt du parenchyme en voie de sclérose, apparaissent à côté de l'épiderme. Cette bande généralement continue, mais pouvant être interrompue ici et là par du parenchyme interne, est appelée hypoderme. Tous les tissus du sol situés à l'intérieur de l'hypoderme sont composés de cellules de parenchyme à paroi mince avec des espaces intercellulaires abondants. En fait, les faisceaux restent incrustés dans le tissu parenchymateux du sol.

En raison de la distribution irrégulière des faisceaux dans le tissu du sol, l'apparence d'une stèle est perdue. Comme déjà dit, ce type est appelé atactostèle. Les faisceaux vasculaires (Fig. 592) sont collatéraux et fermés. Le xylème se présente sous la forme de la lettre Y--les deux vaisseaux du métaxylème avec des cavités plus larges et un épaississement piqué aux deux bras, et les vaisseaux du protoxylème généralement un ou deux, avec des cavités étroites et un épaississement en spirale ou annulaire à la base.

Quelques trachéides se trouvent près du protoxylème. Dans un faisceau mature, les éléments du Xylem subissent de plus en plus de lignification et le protoxylème le plus bas se désintègre en formant une lacune ou une cavité appelée cavité du protoxylème. Les cellules du parenchyme restent également associées à d'autres éléments du xylème. Phloem est plutôt petit. Il est composé uniquement de tubes criblés et de cellules compagnes, le parenchyme du phloème étant absent.

Dans un faisceau mature, le protophloème est souvent écrasé en raison de la pression exercée par les tissus internes. L'ensemble du faisceau vasculaire reste entouré de cellules de sclérenchyme, formant ce que l'on appelle la gaine du faisceau. Les gaines des petits faisceaux situés en périphérie et les cellules clarifiées hypodermiques fusionnent souvent, de sorte que ces faisceaux semblent être noyés dans la gaine.

2. Tige de blé :

La tige du blé (Triticum vulgar e de la famille des Graminaceae) et, en fait, de nombreuses graminées sont creuses aux entre-nœuds avec des faisceaux vasculaires disposés en deux anneaux.

Une section transversale (Figs. 593 & 594) prise à travers l'entre-nœud montre le plan d'arrangement suivant des tissus :

Il est comme d'habitude monocouche, composé de cellules tabulaires disposées de manière compacte avec des parois externes cuticularisées. Des stomates peuvent être présents ici et là.

II. Tissus broyés :

Quelques cellules de sclérenchyme apparaissent sous forme de plaques dans la région sous-épidermique. Ils ne sont pas disposés en une bande continue, mais sont interrompus par des cellules de parenchyme contenant des chloroplastes ici et là. Ces derniers se produisent dans les régions où les stomates sont présents sur l'épiderme. La partie restante du tissu broyé est parenchymateuse, les cellules ayant des espaces intercellulaires bien visibles. La partie centrale est creuse.

III. Faisceaux vasculaires:

Les faisceaux vasculaires se présentent en deux séries. Un anneau de petits faisceaux reste associé au sclérenchyme sous-épidermique, de sorte qu'ils semblent être incrustés dans des plaques sclérenchymateuses. Le deuxième anneau placé plus bas est composé de faisceaux plus gros. Comme ceux de la tige de maïs, les bottes sont collatérales et fermées. Ils restent généralement entourés d'une gaine de faisceau sclérenchymateuse. La gaine des faisceaux du cercle externe atteint effectivement l'épiderme.

3. Tige d'une herbe aquatique :

Une coupe transversale de la tige d'une graminée aquatique (Leptochloa chinensis de la famille des Graminaceae) est prélevée et colorée de manière appropriée.

Il montrerait le plan suivant d'arrangement des tissus (Fig. 595) :

Il est comme d'habitude unisérié, composé d'une rangée de cellules compactes avec des parois externes cuticularisées.

À l'intérieur de l'épiderme, il y a deux ou trois couches de sclérenchyme formant l'hypoderme. Les cellules du parenchyme avec de nombreux espaces intercellulaires se trouvent à côté de l'hypoderme. Une autre bande de sclérenchyme est présente, généralement à une ou deux couches dans le tissu du sol. La partie centrale est creuse.

Celles-ci sont assez nombreuses et restent dispersées dans les tissus du sol. Ceux qui se produisent vers la périphérie sont de plus petite taille. Les faisceaux ressemblent à ceux du maïs monocotylédone typique. Ils sont collatéraux et fermés.

Le xylème se compose de deux vaisseaux du métaxylème avec des épaississements piqués et d'un ou deux vaisseaux du protoxylème avec un épaississement en spirale ou annulaire. La cavité du protoxylème est présente. Le phloème est plus petit, composé de tubes criblés et de cellules compagnes, le parenchyme du phloème est absent. Le faisceau reste entouré d'une gaine sclérenchymateuse.

4. Scape (axe floral) de Cannune:

Il (Canna indica de la sous-famille des Gannacées) présente également une structure monootylédone (Fig. 596), bien qu'un peu différente des tiges de maïs et de blé.

C'est la zone de protection unisériée à parois externes cuticularisées.

Quelques couches de parenchyme se produisent à côté de l'épiderme formant un petit cortex. Elle est immédiatement suivie d'une bande de cellules contenant des chloroplastes.

Cette bande est appelée tissu chlorophyllien. Des plaques de sclérenchyme restent attachées au tissu chlorophyllien ici et là. La partie restante est constituée de tissu broyé parenchymateux renfermant les faisceaux vasculaires dispersés.

Les liasses sont collatérales et fermées. Chacun d'eux a une petite quantité de xylème et de phloème, ce dernier avec seulement des tubes criblés et des cellules compagnes. Les cellules de sclérenchyme ne forment pas une gaine entourant l'ensemble du faisceau, comme dans les tiges de maïs et de blé, mais restent en deux taches sur les côtés externe et interne des faisceaux. Le patch du côté extérieur est plus grand formant quelque chose comme un capuchon et celui du côté intérieur est proportionnellement beaucoup plus petit.

Une coupe transversale à travers la tige de l'asperge (A. racemosus de la famille des Liliacées) montrerait le plan suivant de disposition des tissus (Figs. 597-599) :

Il est monocouche composé de cellules arrondies avec des parois externes cuticularisées.

A côté de l'épiderme se trouvent quelques couches de cellules du parenchyme contenant d'abondants chloroplastes, de sorte qu'elles forment ensemble quelque chose comme une ceinture verte. Cette bande faite de parenchyme peut être appelée cortex.

La couche interne du parenchyme contenant de la chlorophylle est constituée d'une seule rangée de cellules compactes, formant la gaine d'amidon. Viennent ensuite quelques couches de sclérenchyme en forme de bande. La 22 [une] partie centrale de la tige est composée d'un parenchyme à paroi mince avec des espaces intercellulaires distincts. Des faisceaux vasculaires restent incrustés dans cette portion parenchymateuse centrale.

Comme chez les autres monocotylédones, les faisceaux restent dispersés, les faisceaux centraux sont plus gros que les périphériques. Ce dernier peut toucher la bande sclérenchymateuse. Les liasses sont collatérales et fermées.

Ici, le xylème se présente sous la forme de la lettre V (Fig. 599), les vaisseaux du métaxylème formant le bras et le protoxylème, la base. Le phloème avec des tubes criblés et des cellules compagnes est situé entre deux bras de cellules V. Sclerenchyma entourant le faisceau - la gaine dite du faisceau est absente.


Signalisation cellulaire au méristème de la pousse

Le développement des plantes est fondamentalement différent de la structuration du développement chez la plupart des animaux en ce que la majeure partie du plan corporel est établie après l'embryogenèse. Cela est possible parce que les plantes conservent deux populations de cellules souches : le méristème des pousses et le méristème des racines.

Les méristèmes des pousses régulent la formation des organes en équilibrant soigneusement le maintien de cellules souches indifférenciées et l'engagement de cellules correctement positionnées vers la différenciation.

Les criblages génétiques révèlent maintenant les voies de signalisation qui régulent cet équilibre et les mécanismes qui interviennent ensuite dans le développement des organes.

Écrans dans Arabidopsis thaliana pour les mutants dépourvus de cellules souches ou ayant des cellules souches ectopiques ont découvert une voie de transduction du signal qui contrôle le comportement des cellules souches. Les CLAVATE (CLV) les composants de la voie de signalisation identifiés jusqu'à présent consistent en un récepteur kinase putatif (CLV1), son partenaire de dimérisation (CLV2) et son ligand proposé (CLV3).

D'autres protéines en interaction incluent la protéine phosphatase associée à la kinase KAPP, qui est proposée pour réguler négativement CLV1, et ROP, un membre de la petite superfamille GTPase Ras, qui pourrait réguler la signalisation en aval.

WUSCHEL, un facteur de transcription putatif contenant un homéodomaine qui signale le destin des cellules souches aux cellules sus-jacentes au méristème de la pousse, est régulé, au moins indirectement, par les protéines CLV. Une boucle de rétroaction a été montrée entre WUS et CLV3, qui permet d'atteindre un équilibre, résultant en une population stable de cellules souches.

Après le début de la différenciation, les organes sont initiés dans des schémas spatiaux distincts. Une analyse plus approfondie de PÉRIANTHIE, qui est nécessaire pour le bon nombre d'organes dans le méristème de la fleur, pourrait nous éclairer sur la façon dont cela se produit.

D'autres mutants ont été identifiés comme médiateurs de la séparation des organes au cours des premiers stades de l'initiation des organes. Perte de STM, CUC1 ou CUC2 entraîne la fusion des premiers organes initiés.

La polarité des organes est initiée par une croissance asymétrique au cours des premiers stades du développement des organes. Les molécules qui dirigent cela sont découvertes dans le muflier, le maïs et Arabidopsis, révélant des mécanismes conservés.


Qu'est-ce que "l'annihilation" n'a pas de sens à propos de l'horreur scientifique

Le film d'Alex Garland n'est pas scientifiquement exact, mais ce qu'il propose est bien plus précieux.

Ciara Wardlow

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[Cette histoire contient des spoilers pour Annihilation]

Il y a plus de cent ans, le philosophe et écrivain G.K. Chesterton a écrit que le microscope était la seule invention qui ait jamais agrandi le monde, et il a toujours raison. Tout, des télescopes aux trains en passant par Internet, nous a rapprochés de personnes, de lieux et de choses qui auraient été autrement lointaines et obscures. Le microscope fait quelque chose de complètement différent. Cela prend des choses banales et ordinaires et révèle des mondes autrefois invisibles tout autour de nous &mdash une communauté kaléidoscopique contenue dans une goutte d'eau d'un étang, une peste potentielle et un antibiotique potentiel partageant le même centimètre carré de saleté apparemment inoffensif. C'est beau et terrifiant et tout à fait différent de la boue verte laide & ldquogerm & rdquo vue dans les publicités de désinfectant pour les mains.

La science-fiction aime le monde des microbes et des gènes, et elle adore dépeindre les scientifiques amoureux d'eux. Leur fascination est presque toujours orgueilleuse et ils finissent généralement par déclencher une peste ou un monstre qui continue de terroriser l'humanité dans leur erreur. En tant qu'étudiant en biologie avec un intérêt particulier pour la vie au niveau microscopique &mdash un compteur de cellules et non un chasseur d'écureuils, pour paraphraser un professeur que j'ai eu une fois &mdash, j'ai été constamment frustré par l'échec de ces récits à aborder Pourquoi un humain même vaguement sain d'esprit verrait l'attrait de ces domaines d'étude.

Entrez Alex Garland’s Annihilation, qui met en vedette Natalie Portman en tant que biologiste, l'une des quatre femmes envoyées en expédition dans la zone X, une région en constante évolution consommée par un phénomène mystérieux connu sous le nom de The Shimmer.

En examinant les &ldquofacts,&rdquo individuels AnnihilationLa science de ‘s est souvent assez éloignée de la base. From its depiction of what human cells look like under a microscope to its summarization of Hox genes &mdash which biology students know are important in determining body plan along the anterior-posterior axis but hardly sufficient to provide a full blueprint for human-shaped topiaries &mdash the film takes considerable creative liberties when it comes to biology.

But the film delivers elements that are intriguing to engage with from a biological perspective, such as its depiction of how The Shimmer might theoretically function, and how people would interact with it. It’s a departure from the usual sci-fi narrative, which leaves the biology student part of my brain in something of a stress-induced coma.

With the exception of a handful of instances of hypothesizing, Annihilation leaves the viewer to interpret its eerie, surreal visuals as they will. The Shimmer is clearly mutagenic, as demonstrated by the wonder-plants and super-alligator, and inspires a huge amount of destabilization on the molecular level &mdash all of the mutations, also the moving skin, etc. &mdash but the film wisely avoids lingering too much on the &ldquohow.&rdquo The Shimmer displays enough relative consistency &mdash a certain degree of repetition in characteristics and patterns, which in turn often seem to have a fractal-like internal logic &mdash to give the sense of there really being some universal underlying mechanism at work. An unknown, alien, potentially even unknowable mechanism, but a consistent mechanism nonetheless.

It both leaves room and gives reason for a biology nerd like me to speculate over whether, say, a hypothetical extraterrestrial mutagen might be able to mess with cells here on Earth in ways almost beyond imagining. Or whether or not some space microbe that evolved under entirely different conditions and perhaps from entirely different materials could engage in some drastic version of horizontal gene transfer (that is, a transfer of genetic material between unrelated individuals, even individuals of different species, instead of vertical parent-child gene transmission).

So often,sci-fi narratives involving extraterrestrial life feature aliens that are sentient, highly intelligent beings. This is, of course, an intriguing and also terrifying concept from a storytelling angle, but, as Annihilation so beautifully demonstrates, there is so much more to explore. I am not claiming to know what exactly what The Shimmer is or what every little detail of the film means. One of the best and worst things about science is that it actually cannot solve all the mysteries of the universe. It is a method that can only be applied to specific inquires investigating falsifiable, empirically measurable claims. Metaphysics is a completely separate creature that it is not equipped to battle.

I personally interpreted The Shimmer as being some kind of extraterrestrial entity not unlike a virus, something in a nebulous region between living and non-living but with a huge potential to fundamentally alter the functions of various other living things. One of the most fascinating and frightening aspects of the microscopic world &mdash the world of individual cells and viruses and genes &mdash is that the question of intent does not apply. Ebola is a terrifying disease, yet an Ebola virus is not a villain in the traditional sense. It has no master plan, no evil plot to kill the world, no consciousness at all. C'est simplement est et Est-ce que while humans scramble to outmaneuver a thing that doesn&rsquot even have a brain, and yet, in a certain sense, is somehow so much smarter than us. It&rsquos terrible and fascinating, a particular push-pull of attraction and repulsion. Such a thing has endless dramatic potential, yet I have rarely encountered a narrative that has managed to replicate this particular brand of feeling, and certainly never before seen a film that mimics it half so well as Annihilation. But perhaps this argument could benefit from an example.

In a developmental biology class I took as a college sophomore, we replicated a classic study investigating eye development. We bred mutant fruit flies that expressed the eye development gene called eyeless &mdash a gene with a human equivalent known as PAX6 &mdash all over their bodies. When we observed our mutants under a microscope once they hatched, we saw that they had developed little eyes everywhere &mdash where their legs would normally grow, where their wings sprouted. I will never forget the feeling of looking at those mutant flies. J'étais fasciné. I was repulsed. I had done that. I had made a tiny monster, like all the evil scientists in the movies.

Only, I didn&rsquot feel god-like, or even especially powerful, the way that all those stories love to warn against. On the contrary, I actually felt incredibly small. A variant of the system I had interfered with was at work in my body too. While the scientific library of what we know and understand is larger than ever and grows larger every day, it will never compete with the infinite enormity of what we do not know, not to mention what we cannot know scientifically because said knowledge exists outside the bounds of what the scientific method can investigate. It was the enormity of everything I didn&rsquot know and would never know that was especially salient to me in that moment.

Nearly every new answer science gives brings a host of new questions. Sometimes multiple answers that all seem equally valid don&rsquot add up to a picture that seems to make any sense. Dogmas are repeatedly established, revised, broken, and replaced. Being on the cutting edge of scientific understanding is not collecting an ever-growing pool of facts and figures, it&rsquos an expansion of knowledge that&rsquos mixed with constantly revising, un-learning, re-learning, re-organizing, and re-interpreting what you formerly thought you knew. At the heart of good science is a vein of self-destruction. From Charles Darwin to cloning pioneer John Gurdon, many of what we now consider the great breakthroughs in scientific understanding pushed science forward by destroying what was previously accepted as truth.

On one hand, the scientific method requires accepting the results of research that has come before in order to make progress possible. On the other, good science means questioning everything, doubting everything, being fully willing to change your convictions when contrary evidence is presented, even if it requires rethinking everything you thought you knew or having to write off years of work as a loss. It&rsquos a constant struggle.

Dans Annihilation, writer/director Garland presents one of the best meditations I have ever seen on the metaphysics of scientific inquiry &mdash about the fundamental nature of science that, ironically, cannot in itself be investigated through the scientific method. It&rsquos not a warning about science hubristically &ldquoplaying god&rdquo or a cinematic slap on the wrist about the dangers of pursuing knowledge. It&rsquos not blindly espousing the joys of scientific progress without acknowledging its shortcomings or inherent risks. And no, it&rsquos not scientifically accurate by any means. But what the film does have is far more valuable.

Annihilation gets at the heart of what compels the pursuit of scientific knowledge. It captures the push-pull of fascination and repulsion that science, and the study of biology in particular, so often inspires, and it does so better than any film this student of both biology and cinema has ever seen. It lays bare the beauty and the horror, and most importantly, it makes no judgment.

Watch it and decide for yourself.

Ciara Wardlow is a Wellesley College student double majoring in Cinema and Media Studies as well as Biological Sciences.


To investigate sclerenchyma fibres

To see sclerenchyma fibres in tissue paper.

Matériaux

cheap toilet paper (single ply)

Instructions

  1. Tear a tiny piece of toilet paper off the sample and mount it in water or iodine solution.
  2. Place on a cover slip and examine under the microscope on low power.
  3. Focus on the torn edge of the paper and observe the long sclerenchyma fibres.
  4. Observe on high power.

Des questions

  1. Describe the shape of these cells.
  2. Are they living or dead cells?
  3. Suggest their function.

To investigate sclerenchyma fibres

NOTES TO TEACHERS

  1. Describe the shape of these cells.
  2. Are they living or dead cells?
  3. Suggest their function.
  1. Cells are very long and pointed.
  2. Dead cells.
  3. They provide strength and support and help transport water.

We will now examine the complex permanent tissues. Remember the difference between simple and complex permanent tissues is that simple permanent tissues are made up of cells of the same type whereas complex permanent tissues are made up of more than one cell type that combine to perform a particular function. We will examine the vascular tissues, xylem and phloem tissues next.

Xylem tissue (ESG6F)

Xylem has the dual function of supporting the plant and transporting water and dissolved mineral salts from the roots to the stems and leaves. It is made up of vessels, tracheids, fibres and parenchyma cells. The vessels and tracheids are non-living at maturity and are hollow to allow the transport of water. Both vessels and tracheids have lignin in their secondary walls, which provides additional strength and support.

Xylem vessels are composed of a long chain of straight, elongated, tough, dead cells known as vessel elements. The vessel elements are long and hollow (lack protoplasm) and they make a long tube because the cells are arranged end to end, and the point of contact between two cells is dissolved away. The role of xylem vessels is to transport water from roots to leaves. Xylem vessels often have patterns of thickening in their secondary walls. Secondary wall thickening can be in the form of spirals, rings or pits.

Trachéides have thick secondary cell walls and are tapered at the ends. The thick walls of the tracheids provide support and tracheids do not have end openings like the vessels. The tracheids' ends overlap with one another, with pairs of pits present which allow water to pass through horizontally from cell to cell.

Figure 4.16: Longitudinal section through a xylem vessel to show hollow lumen to allow for transport of water and nutrients.

Figure 4.17: Xylem vessel fibres with rings of lignin thickening.

In addition to transporting water and mineral salts from roots to leaves, xylem also provides support to plants and trees because of its tough lignified vessel elements.

StructureFonction
Long cellsForm effective conducting tubes for water and minerals
Dead cells: no cytoplasmNo obstruction to water transport
Thick, lignified wallsSupport the plant and are strong enough to resist the suction force of transpiration pull, so they don’t collapse
Pits in cell wallsAllow lateral water transport to neighbouring cells
Tracheids have tapered endsImproved flexibility of the stem in wind
Vessels elements have open endsWater is transported directly to the next cell
No intercellular spacesAdded support for the stem
Living parenchyma cells in between xylemForm vascular rays for water transport to the cortex of the stem
Patterns of secondary wall thickeningImprove flexibility of the stem in wind and allow the stem to stretch as it lengthens

Do leaves grow larger by adding cells at the centre or at the edge? - La biologie


Early Plasmolysis

Late Plasmolysis

Topics Addressed:

Description of Investigation

Observation of a leaf of the water plant Élodée

Standards addressed:

LA BIOLOGIE
Biologie cellulaire
1. a. Étudiants savoir cells are enclosed within semipermeable membranes that regulate their interaction with their surroundings.

SEVENTH GRADE LIFE SCIENCE
Biologie cellulaire
1. a. Students know cells function similarly in all living organisms.
1. b.Students know the characteristics that distinguish plant cells from animal cells, including chloroplasts and cell walls.

under normal conditions with a microscope.

Observation of plasmolysis when the leaf is flooded with 6%

Further observations when the plant leaf is rehydrated

  • Microscope
  • Élodée in aquarium water
  • Slides and Cover slips
  • Eau distillée
  • 6% NaCl solution (salt water)
  • Paper towels or tissues
  • Prepare a wet mount of one leaf from the water plant Élodée using the water in which it is kept.
  • Observe the cells under normal conditions, and make a sketch of what you see.
  • While observing the leaf under the microscope, wick a solution of 6% NaCl (sodium chloride) across the slide.
  • Sketch your observations.
  • With the same leaf, try wicking distilled water across the slide.
  • Enregistrez vos observations.

Guide d'étude:

  • Compare the location of chloroplasts in normal and plasmolyzed cells.
  • What was the cause for the change in the location of the chloroplasts in the two solutions?
  • Did the Elodea cell change shape? Pourquoi ou pourquoi pas?
  • Describe the location of the chloroplasts when the plasmolyzed cell was flooded with distilled water?
  • What was the cause for the change seen with distilled water?

The technique of "wicking" is used to draw a solution across the specimen on a slide. By placing a piece of tissue or paper towel at one edge (right) and dropping the solution at the edge of the other side (left), the solution is drawn or "wicked" across the specimen.


Calcium deficiency guide

Calcium occurs throughout the entire plant. It is used for many processes in the plant, however, calcium is most important for the growth process. It has a regulating effect in the cells and contributes to the stability of the plant. Plants have two transportation systems at their disposal: the xylem vessels and the sieve vessels. Most nutrients can be transported via both systems, however, for calcium this is not possible.

Since calcium can be transported almost exclusively via the xylem vessels, it is an element that deposes of little mobility within the plant. It is, therefore, important that a sufficient amount of calcium is always available in the root environment, so that it will be continuously available for absorption by the plant.


Observations

When observing the onion skin cell, we noticed that the cells took on a brick-like structure and within the cells, small dots (the nuclei) can be seen. When we first looked into the microscope, the microscope’s total magnification was 40X so there were about a hundred rows of rectangular

cells (see diagram provided), but as we changed magnifications, the number of cells in the field of view decreased.

When we viewed the onion skin cells at 400X total magnification, we noticed the nuclei of the cells looked clearer and larger and we were able to study the cell with more understanding than when we used the first magnification.

The organelles that we were able to see in this type of cell were the nucleus, the cytoplasm, and the cell wall. Unlike the onion skin cells, the cheek cells were more spread out from each other and they

all had a round shape. When we viewed the cheek cells at 40X total magnification, we noticed that the cells were secluded and spread out (see diagram provided). At 400X total magnification, we were only able to view one cell at a time, due to the fact that the cells were separated from each other.

The organelles that were visible in this type of cell were the nucleus, the cytoplasm and the cell membrane. Aside from the actual cells, we were able to see air bubbles within both the onion skin cell slide and the cheek cell slide.


Discussion

We have described the function and expression of the JAG gene, an important regulator of growth in lateral organs of Arabidopsis. JAGcan activate growth of many different tissue types, including bracts, which are suppressed in wild-type plants. L'absence de JAG expression from the cryptic bracts of wild-type plants contrasts with expression in most other lateral organs, suggesting a possible cause for bractless flowers in Arabidopsis and its relatives.

Le rôle de JAG in lateral organ development

The plant shoot apex is a dynamic structure in which a meristem maintains a population of undifferentiated stem cells that later undergoes a process of differentiation to form lateral organs. This process involves several steps,beginning with the loss of meristem identity and the acquisition of lateral organ identity, followed by organ outgrowth and morphogenesis, then cell-cycle arrest and finally histogenesis. Progress through differentiation, however,must be regulated so that organs can be properly shaped. If tissues exit the cell cycle prematurely, morphogenesis is incomplete, whereas if cell-cycle arrest does not occur, lateral organs would continue to grow ad infinitum.

Dans jag loss-of-function mutants, lateral organs do not develop completely, with the strongest defects in the distal regions of organs. In petals, we have shown that this is probably due to a reduction in cell-cycle activity. In eudicots, lateral organs typically differentiate in a basipetal fashion with cells at the tip exiting the cell cycle before those at the base(Donnelly et al., 1999 Nath et al., 2003 Poethig and Sussex, 1985). We propose that JAG slows the cessation of cell division in the distal region of organs until proper morphogenesis has occurred, which is particularly apparent in floral organs, since these form different structures along the proximal-distal axis. JAG is also expressed in the blade region of leaves, and jag loss-of-function mutants develop serrated leaves. While we did not detect a change in total leaf area, the serrated leaves may be caused by a reduction in growth in the inter-hydathode regions of the blade. In this regard it is interesting to note that plants that overexpress ICK1 ou KRP2, negative regulators of the cell cycle, also have jagged leaf blades (De Veylder et al., 2001 Wang et al., 2000). This interpretation is also consistent with jag-5D gain-of-function phenotypes in which rosette leaves develop ectopic blade tissue along the petiole. It is an intriguing concept that the shape of organs and the architecture of shoots in plants may be, in part, the result of controlled differentiation of tissues. Thus, the plant may be sculpted by the opposing inputs from genes like CIN that promote cell-cycle arrest, and genes like JAG that suppress cell-cycle arrest.

One of the most dramatic consequences of JAG over-expression in AP1::JAG plants is the inhibition of floral organ boundaries and the precocious growth of sepals creating tube- and snake-like structures. These phenotypes suggest that increased JAG levels can override factors that inhibit the growth of specific organ regions. Cette JAGover-expression has such dramatic consequences even though JAG is normally expressed in young organs indicates that expression levels need to be finely tuned for proper function of JAG.

Bract development in Arabidopsis

One of the characteristic features of members of the Brassicaceae family is that most flowers lack bracts, which is in stark contrast to the presence of these organs in most eudicots. However, bracts are not completely absent in Brassicaceae as basal flowers in many species are subtended by bracts(Arber, 1931). Although bracts are normally absent in Arabidopsis, they can develop in certain backgrounds, such as lfy, ufo ou fil mutants. Less pronounced activation of cryptic bracts is seen when flowers are ablated through expression of a toxin (Nilsson et al., 1998). Even in wild-type plants, molecular markers indicate the presence of a cryptic bract whose outgrowth is normally suppressed(Long and Barton, 2000). Thus,while the bract appears to be dispensable for the final architecture of the Arabidopsis inflorescence, the bract is still patterned.

Dans Arabidopsis, several genes, FIL, AINTEGUMENTA, ASYMMETRIC LEAVES1 et STYLISH1, are expressed in incipient lateral organs(Byrne et al., 2000 Kuusk et al., 2002 Siegfried et al., 1999). At least some of these genes are required for the development of lateral organs,but none is sufficient to activate bract development, even though they are expressed in the cryptic bract. Thus, their activity is either specifically suppressed in the cryptic bract, or bract outgrowth requires another factor. The latter scenario is supported by the finding that JAG is absent from the cryptic bract, but can activate its outgrowth when ectopically expressed in jag-5D mutants. That this function does not merely represent a neomorphic activity is demonstrated by our observation that JAG is required for outgrowth of ectopic bracts that form in ap1-15. It is particularly interesting that loss of JAGfunction in an ap1-15 background primarily affects bracts, even though it is also expressed in other organs. Cela peut indiquer que JAG is more important for the growth of bracts, and that redundancy with a gene such as JGL may mask essential functions in other organs. Alternativement, ap1 bracts may be particularly sensitive to defects in organogenesis. This could be the case if ap1 bracts are under similar suppressive influences as bracts of the main inflorescences. In this case,loss of JAG would sensitize the bract to suppression of outgrowth. This interpretation is further supported by the observation that loss-of-function in another gene important for lateral organ development, AINTEGUMENTA, also has a negative effect on bract development in ap1 mutants (B. Krizek, personal communication).

Since our data suggest that JAG is both necessary and sufficient for bract formation, and since JAG expression is normally excluded from the cryptic bract, one can speculate that bract-specific suppression of JAG expression is the cause of bractless flowers in the Brassicaceae. As there are also other examples of bract suppression in plants outside of Brassicaceae, such as in the maize inflorescence(Ritter et al., 2002), it will be interesting to determine the possible role that JAG plays in the evolution of this intriguing plant characteristic in other species, as well.


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